Biotechnologie

néanmoins ça reste très intéressant tous ce que l'on peux faire et jusqu'au l on peux y aller (théoriquement) .
mais bon la BS ne fait pas qu'assembler des gènes pour "créé" des monstres !!!

c 'est le bon Dieu qui a donner cette science aux humains et c'est a nous d'en faire bon usage .

Avis aux Biotechnologues ! (Pourvu que quelqu'un y réponde :s)

J'aimerai que l'un de vous nous poste l'emploi du temps entier, ce serait très gentil étant donné que j'en ai besoin ... Merci d'avance ;)

desolé eternelle2 je l'ai suprimé

Arf ! Tu m'avais dit l'avoir en tête non?

Tu l'as oublié ? Je ne sais même pas ce qu'à le groupe2 comme TD le lundi :s

en tt cas on es dans le meme groupe za3ma tu va preparé tes exo je te connai bien tu fera rien donc ....

TORRES a écrit:

en tt cas on es dans le meme groupe za3ma tu va preparé tes exo je te connai bien tu fera rien donc .... nono

Euh ... Quels exercices ? (Nous en avons eu ?)
Ceci ne m'a point traversé l'esprit (D'ailleurs tu l'as deviné => *Applaudissements*) j'en ai besoin pour autre chose par contre :s

Merci comme même :)

Bonjour à tous !

J'ai une question pour ceux qui puissent m'apporter une réponse ;).

Signalisation :

Voie des PLA2 :
On a dit que l’activation de cette voie peut être directe (indépendante de la PLC) ou alors indirecte (Dans ce cas elle en dépend).

Ce qui m’intrigue c’est dire que les récepteurs 7 TMS couplés à des protéines Gi activent la cPLA2 alors que dans le tableau récapitulatif des familles des Protéines G identifiées par leur sous unité α là on voit que la protéine G en question est une Protéine Gα12 quant à ce qu’on a fait en TD après vérification, j’ai vu que dans le cas de l’activation directe c’était une protéine Gαi toutefois le cas de l’activation indirecte impliquait une protéine Gαq … Du coup j’suis complètement perdue laquelle est couplée aux R7TMS ? Est-ce la même dans les deux cas ? Ou deux différentes ?

Merci beaucoup d'avance ;)

J'ai fait la même réflexion... c'est vrai que c'est contradictoire, entre le tableau et les schémas !!! mais j'ai pas trouvé de réponse à cela, faut poser la question au prof, c'est plus facile !!

Moi je sais que le recepteur est un seul et il s'apelle recepteur alpha adrenergique et il est capable d'activer deux proteines G differentes: la Gi qui est sensée activer directement la PLA2 et la G(alpha)q qui active au meme temps la voie des MAPK en activant la cascase des GRK mais aussi en activant la PLCbeta pour produire de l'acide arachidonique

J'pense que c'est une bonne idée que de poser la question à la prof' ;)

Merci infiniment à vous deux !

Salem et bonsoir à tous :)

Euh j'ai quelques questions une fois de plus mais cette fois ci concernant les mutations étudiées donc en BMGG !

@ commencer par la mutagénèse aléatoire in vitro : Qui se fait par l'utilisation de polymérases
Humm ce n'est pas que je n'ai pas compris cette partie là mais j'suis convaincue d'avoir pris des notes incomplètes sachant qu'on avait détaillé 3 techniques :
La première était à commencer par une digestion partielle de l'ADN à muter (Création de coupures par une Dnase 1) et puis ajout d'une polymérase 1 en présence d'analogues de nucléotides ... j'ai écrit aussi ajout de 4 dNTP et N'hydroxycytosine (Qui transforme le T en C ) => Après transcription par la polymérase dans ces conditions, une mutation en résulte
Seulement dit de cette manière là, me donne l'impression que c'est un ensemble d'idées en désordre

Pour la 2ème tech' : Nous avons les nicks crées de la même façon que dans la technique précédente seulement cette fois ci ces coupures sont élargies ou agrandies à l'aide d'une exonucléase (Ce qui libère des simples brins) par la suite un traitement par le bisulfite de sodium qui converti les cytosines en uraciles puis synthèse du brin manquant par la polymérase :)

Troisièmement celle qui est la plus utilisée qui consiste à l'utilisation des erreurs faites par une polymérase dépourvue d'activité 3'5' exonucléase encore appelée activité de correction. L’ADN polymérase Taq est une de ces enzymes. On clone ensuite le fragment de PCR dans un plasmide.
Deux méthodes peuvent être utilisées pour augmenter le nombre de mutations :
- 1. utilisation d'un milieu réactionnel favorable aux erreurs tels que la forte concentration en ions manganèse (500 μM)
- 2. Utilisation d’un biais dans la concentration en dNTP. On utilise dans ce dernier cas la relativement bonne stabilité du mésappariement G:T, et on met dans la solution une forte concentration en dTTP (1 mM) et une faible concentration en dCTP (1 μM).

Voilà pour cela j'aimerai savoir si la reprise de mes notes sous formes de phrases est correcte et que l'on veuille bien le compléter si toutefois j'ai oublié des détails importants ... :s

Sinon je n'ai pas compris par contre la mutagénèse ciblée in vivo :( Si quelqu'un peut m'en parler brièvement ou au moins me donner le principe ?

D'autre part j'aimerai aussi qu'on me dise l'orientation de l'activité exonucléasique et polymérasique de la poly 1 j'crois !
Une fois j'trouve que 3'5' est l'activité exonucléasique d'ailleurs c'est ce que j'ai appris de mon prof seulement sur la planche du marquage par nick translation par exemple on parle d'activité exonucléasique 5'3' => Complètement perdue :s

Merci d'avance et bonne continuation !

Donne moi 2 min stp ...je vais manger et je reviens pour te répondre ...à tout de suite !

Bien sur merci beaucoup pink, c'est très gentil de ta part ;)
J'y ajoute juste deux petites questions (Désolée d'en abuser xD) pour le séquençage avons nous fait aussi bien la méthode de Sanger (Qui est une méthode enzymatique si mes souvenirs sont bons) que celle chimique de Gilbert et Maxam ? Oui ou non car j'peux me débrouiller pour le reste ;) Ce jour là j'étais arrivée en retard (comme d'hab' quoi -_-") Il parlait de PCR-SSCP qu'a-t-il dit au juste ?

Merci beaucoup et rabi ydjazik sans oublier bien sur => Bon appétit ! ;)

Me revoilà ...merci éternelle, à toi de même (car je parie que t'as pas encore manger ...lol) je vais faire de mon mieux pour te répondre à tes question ! je suis l'enchainement de tes questions :
1) C'est bien ces méthodes qu'on a vu en cours ...pour la premiére méthode, ta question ne m'est pas venue à l'esprit mais maintenant que j'y pense :peut être qu'en créant des coupures, on fait exposer plus nos bases, donc la T va être plus exposée et donc va être transformée en C ....d'où la mutation !! d'aprés ce que j'ai compris !!
je crois que t'as bien noté, rajoute juste que c'est l'exonucléase 3 ...qui coupe à partir des extrémités 3' ....
la suite est juste,juste l'histoire des dNTP et dTTp ..ect c'est pas ce que j'ai noté : j'ai noté qu'au lieu d'avoir dttp on aura dctp ...

2) mut. ciblée in vivo:on a dit que si on veut insérer un géne, on rajoute aux extrémités de ce dernier des séquences analogues au géne cible ...on aura donc un remplacement avec 2 crossing over ... sinon, on circularise le géne et là on aura une insertion avec un seul C.O
la suite c'est un peu khaloutta, c'est embrouillé chez moi, moi même j'arrive pas à comprendre ..
3) L'adn poly est dotée de 2 activités : polymérasique 5' _ 3' et exonucléasique dans les deux sens :5'_3' et 3'_5' maintenant cette adn poly a ses dérivés tel que :fragment de klenom qui est dépourvu de l'act. exonuc 5'3'....et la taq qui est dépourvue de la meme activité mais dans le sens 3'5'
4) oui on a fait les deux ...et y avait les dans les résumés
5) PCR sscp: on fait une eléctrophorése basée sur la conformation d'adn simple bien ... on compare parallélement les fragments qui ont migré concernant un adn sain et d'autres concernant un adn muté et là si y a mutation , t'es censée voir une différence.. mais zidi vérifier sur le net c'est plus sur ....



Voilà j'éspere t'avoir étè d'une aide estimable ...ets sinon bon courage ...si t'as d'autres questions n'hésites pas (juste stp quand tu réponds bip moi car je vais pas resté devant le PC )

Pinko a écrit:

Me revoilà ...merci éternelle, à toi de même (car je parie que t'as pas encore manger ...lol)

Wallah bien deviné, toujours pas xD

Pinko a écrit:

la suite est juste,juste l'histoire des dNTP et dTTp ..ect c'est pas ce que j'ai noté : j'ai noté qu'au lieu d'avoir dttp on aura dctp ...

Ben oui moi aussi c'est ce que j'ai noté du moins j'ai noté un truc du genre après l'ajout de Mn²+ à une concentration de 500 microM pour augmenter l'erreur j'ai ajouté que l'on ajoute aussi par la suite une forte concentration de dTTP et une autre mais plus faible en dCTP est ce un ajout ou un résultat ? Mais j'comprends de ta réponse que c'était un résultat seulement nos deux notes sont contradictoire -_-' par contre sur un PDF j'ai trouvé ce que j'ai posté précédemment du coup là j'suis toujours un peu embrouillée seulement j'avoue que c'est plus clair pour le reste =)

P!nko a écrit:

3) L'adn poly est dotée de 2 activités : polymérasique 5' _ 3' et exonucléasique dans les deux sens :5'_3' et 3'_5' maintenant cette adn poly a ses dérivés tel que :fragment de klenom qui est dépourvu de l'act. exonuc 5'3'....et la taq qui est dépourvue de la meme activité mais dans le sens 3'5'

Oh là là il m'a suffit de n'avoir pas pris ça en note pour complètement me perdre, c'est nettement plus clair et j'comprends mieux pourquoi en nick translation il s'agissait de celle dans le sens 5'3' et d'autre fois pas, alors là mille merci mais une autre question m'est venue à l'esprit à l'instant ceci voudrait-il signifier qu'en dehors de l'activité dont l'une ou l'autre est dépourvue elle possède l'autre ? Ex: la taq n'a pas celle dans le sens 3'5' est ce qu'elle a celle dans le sens 5'3' ? Un peu ridicule comme question mais bon :p.

Ma petite pinko a écrit:

Voilà j'éspere t'avoir étè d'une aide estimable ...ets sinon bon courage ...si t'as d'autres questions n'hésites pas (juste stp quand tu réponds bip moi car je vais pas resté devant le PC )

Maintenant la mutagénèse dirigée in vitro disant par oligonucléotide de synthèse : Dénaturation, hybridation et polymérisation les 1ères étapes puis une transformation et théoriquement on a dit du moins le prof a dit qu'on obtiendra deux types de plasmides en quantité égale 50% mutant et 50% autre sauvage, j'ai lu qu'après il fallait discriminer ces deux types de plasmides (ou enrichir les cultures en clones mutants) après la réplication de ceux obtenus précédemment pour donner un mélange de plasmides sauvages et mutants donc pour cette discrimination il existe plusieurs méthodes => Les a-t-on abordé en cours ? Ex : mutagénèse dirigée selon Kenkel ...? C'est une grande khalouta aussi que j'espère que nous n'ayons pas eu le malheur de faire aussi ?? :(

Tu m'as été d'une aide très estimable surtout que je me trouve dans un état de saturation et donc une recherche m'aurait pris un temps fou !

*J'go manger à mon tour pour une fois que c'est près aussitôt xD*

Ah mais avant cela j'ai encore une autre question => Mais non j'rigole c'était tout du moins pour aujourd'hui xD
Bonne continuation à toi aussi ;)

Aucune question n'est ridicule je te rassure ...bein nous on lui a enlevé celle du sens 3'5' donc elle garde l'autre ...
je t'en pris ,c'est gratos !!! h!h! ...

Salem ! Eih oui une fois de plus, dans le cours de transcription chez les Procaryotes, on a dit que la terminaison se fait par des terminateurs dont on a étudié deux types ceux qui sont Rho dépendants et ceux qui ne le sont pas ... qu'avons nous écrit dans chaque type ?

Ah oui avant d'oublier aussi, pour le séquençage j'aimerai connaitre le sens correcte de la lecture d'un gel de séquence => A chaque fois on fait une électrophorèse et j'ai trouvé une remarque disant la lecture se faisait du + vers le - ou alors autrement dit de 5' vers 3' dans le cas ou l'on aurait marqué notre ADN à l'extrémité 5' ou sur toute sa longueur seulement nous dans un exemple nous l'avions fait dans le sens 3' 5' pour connaitre la séquence du brin à étudier ????

Merci d'avance ma petite pinko ;)

Pour les terminateurs ro indépendants: il faut des sequences palindromiques et des queues poly A pour les ro dep, il faut seulement les seq palindromiques ....les facteurs ro ont deux act : atpasique et hélicase pour déstabiliser le complexe ...
pour le séquençage ...le brin obtenu à partir de l'élèctro est du 3' vers 5' ,et le brin matricielest du sens 5' 3' par complémentarité

Merci beaucoup encore une fois, moi j'avais noté que c'était une seule séquence palindromique pour les rho dep' et c'est ce que j'avais confirmé suite à quelque recherche seulement ma compréhension doit être est peu tordue ces temps ci ... Yek les deux types de terminateurs possèdent ces deux activités ??

Sinon dans le cours de la transcription chez les Euk', le prof ne nous a supprimé aucune partie ? xD Oh ça m'étonnerait de lui mais c'est super long sans parler de la complexité ...

Enfin merci et bonne continuation ;)

Pff ! Le copier coller a fait perdre à mon tableau toute sa belle forme et organisation -_-" Mais il reste lisible j'crois, c'est donc notre emploi du temps pour S6 pour ceux à qui ça intéresse car il faut reconnaitre que j'ai plus tendance à parler seule par ici !

Alors mercredi pour journée libre quant à jeudi on a des modules par quinzaine, exp : Une semaine pharmaco l'autre immuno' du moins si j'ai bien compris ^^.

Je n'ai jamais réussi à recopier un plannig correctement voila pourquoi il manque deux salles (Mardi), désolée --" !

Il ne me reste plus qu'à vous souhaiter une bonne reprise à tous ;)

Merciiiiiiiiiiii
tu est un ange ^^

Ouais merci beaucoup éternelle 2 !!! Il faut dire que je suis un peu trop fainéante pour faire sortir un stylo et une feuille pour recopier un planning !!! j'ai toujours détéster faire ça ! lol ...Il me manque juste deux salles à connaître !!!!
Et sinon, en 3ans, c'est le premier planning qui me plait vu qu'on a une seule fois à 8h ( pour moi les premiéres heures sont un supplice !! ) + une journée libre + 2 fois seulement à 18h ( 1/15 jours ) c'est top quoi !!!

Je vous en pris ! Pour le TD d'Anglais fort possible que l'on commence dès cette semaine incha'elleh (J'ai entendu dire que le groupe 1 avait entamé) pour les salles d'Anglais concernant le groupe 03 c'est la même que celle du groupe 04 quant à nous groupe 02 c'est à la L246 ^^.

Oui j'aime bien aussi notre planning !